標題葉酸的測定方法

微生物法
1.原理
葉酸是酪乳酸桿菌（Lactobacillus casei, L. C, ATCC 7469）生長所必需的營養素。在一定條件下，L.C的生長繁殖與培養基中葉酸含量呈正比關系，細菌增殖的量以光密度值計，通過與標準曲線相比較，計算出樣品中葉酸的含量。
2.適用范圍
參考《Methods of Vitamin Assay》，第4版。本方法適用于各類食物中葉酸的測定。檢測限為0.1ng。
3.儀器與設備
（1） 恒溫培養箱
（2） 離心機
（3） 高壓消毒鍋
（4） 震蕩器
（5） 接種針和接種環
（6） 分光光度計
4.試劑
除特殊說明外，本實驗中所有試劑均為分析純，水為蒸餾水。
（1） 菌種：酪乳酸桿菌（Lactobacillus casei, L.C, ATCC 7469）
（2） 磷酸緩沖液（0.05mol/L, pH6.8）:稱取4.35g Na3PO4·12H2O,10.39g Na2HPO4·7H2O溶解于800ml水中。臨用前用約5g抗壞血酸調節pH至6.8。（注：葉酸對光、熱敏感，易被氧化破壞，抗壞血酸有助于保護葉酸被氧化。）
（3） 雞胰酶溶液： 稱取100mg干燥的雞胰酶（Difco公司）（注：含有葉酸軛合酶，用于水解葉酸多谷氨酸鹽）， 加入20ml磷酸緩沖液制成勻漿，3000rpm離心10min,取上清液備用。臨用前現配。
（4） 蛋白酶-淀粉酶溶液：分別稱取200mg蛋白酶（Sigma公司）和淀粉酶（Sigma公司），加入20ml磷酸緩沖液制成勻漿，離心3000rpm 10min,取上清液備用。臨用前配制。
（5） 2+8乙醇溶液：量取20ml無水乙醇溶液，加入80ml水混勻。
（6） 01mol/L NaOH: 稱取0.4g氫氧化鈉，加2+8乙醇溶液溶解并稀釋至1L。
（7） 10mol/L NaOH。稱取400g氫氧化鈉，加水溶解并稀釋至1L。
（8） 葉酸標準儲備液（200mg/ml）：準確稱取200mg葉酸標準品（Sigma公司，純度大于98%），用0.01mol/L NaOH溶解并定容至1L。儲存于棕色瓶中。
（9） 葉酸標準中間液（200ng/ml）：準確吸取1.0ml葉酸標準儲備液，用0.01mol/L NaOH 溶解并定容至1L。儲存于棕色瓶中。待標定。
標定：準確吸取1ml葉酸標準中間液，用0.1mol/L NaOH定容至10ml。以0.1mol/L NaOH調零點，比色杯厚度1cm，波長256nm，測定3次紫外吸光度值，取平均值，按下式計算標準中間液濃度。

式中：
X1 －－ 葉酸標準中間液濃度，ng/ml；
A －－ 標準中間液平均紫外吸光度值；
E －－ 摩爾消光系數24,500；
M －－ 葉酸分子量441.42；
10－－ 測定紫外吸光度值時的稀釋倍數；
106 －－ 由g/L換算成ng/ml的換算系數。
（10） 葉酸標準工作液（0.2ng/ml）:準確吸取1.0ml葉酸標準中間液，用磷酸緩沖液稀釋定容至1L。
（11） 2.4mol/L HCl：量取20ml濃鹽酸，加水稀釋至100ml。
（12） 酶解酪蛋白溶液：將8g碳酸氫鈉溶解于1L水中，加入60g去維生素酪蛋白（Sigma 公司），用10mol/L NaOH調節pH至 8.0（調pH時應小心，不要過堿后再加酸反復調節，避免酪蛋白結塊）。加入300mg胰酶，攪拌20min，使胰酶混勻充分。再加入2.5ml甲苯，置37℃恒溫箱酶解48～72h（此步驟是將酪蛋白酶解為L.C可以利用的小分子肽。酶解時間不易超過72h，如時間過長，配成的培養基不利于細菌生長）。將酪蛋白液從恒溫箱中取出，121℃高壓30min以終止反應并去除甲苯。冷卻，加10g硅藻土攪拌，用墊有濾紙的布氏漏斗過濾。向濾液中加入約60ml冰乙酸調節pH至3.7。稱取活性炭12g，加入濾液中攪拌10min，用布氏漏斗過濾，重復三次。每次過濾時，布氏漏斗內加有10g硅藻土協助過濾。最后濾液用水稀釋至1200ml，4℃冰箱保存1年（活性碳可吸附酪蛋白中的葉酸以減少試劑空白，同時也可吸附肽及氨基酸，應注意控制攪拌時間）。取10ml酶解后的酪蛋白溶液加入已稱重的蒸發皿中，沸水浴蒸發至干。將蒸發皿置于100℃恒溫烤箱內干燥至恒重，在干燥器中冷卻至室溫。稱量蒸發皿的重量，蒸發皿內固體重量，如固體重量小于400mg，即每毫升酪蛋白溶液中固體含量<40mg，則棄除酪蛋白液，重新制備。
（13） 黃嘌呤溶液：取0.4g黃嘌呤，加入10ml氨水，加熱溶解，用水稀釋至100ml。冰箱保存。
（14） 腺嘌呤-鳥嘌呤-尿嘧啶：分別稱取劉酸腺嘌呤，鹽酸鳥嘌呤和尿嘧啶各0.2g，加入2.4 mol/L HCl溶液10 ml，加熱溶解，用水稀釋至100ml，室溫貯存。
（15） 乙酸緩沖液（1.7mol/L,pH4.5）：38.65g無水乙酸鈉，19.8ml冰乙酸，加水稀釋至500ml。
（16） 維生素溶液：取10mg核黃素溶解于40 ml乙酸緩沖液中。取0.2mg生物素，2.5mg NaHCO3，20mg對氨基苯甲酸，40mg鹽酸吡多醇，4mg鹽酸硫胺素，8mg泛酸鈣，8mg尼克酸溶解于50ml水中。將上述兩種溶液混合，加水至100ml。
（17） 吐溫-80溶液：將2g吐溫-80加入100ml 45℃水中，混勻。
（18） 還原型谷胱甘肽溶液：取0.1g還原型谷胱甘肽，加水至100ml.
（19） 甲鹽溶液：稱取5g磷酸氫二鉀和2g磷酸二氫鉀，加水溶解至100ml，液面上加入少許甲苯保存。
（20） 乙鹽溶液：稱取2 g劉酸鎂，0.5 g劉酸亞鐵和0.5 g劉酸錳，加水至100 ml，液面上加少許甲苯保存。
（21） 基礎培養基：按下表配制，最終定容至500ml。

加水至250 ml，攪拌，用10mol/LnaOH溶液調節pH 6.8±0.1，然后加入乙鹽溶液2.5 ml，磷酸緩沖液200 ml,用水補至500 ml。4℃冰箱內可保存一周 。
（甲、乙鹽混合后易產生沉淀，所以配培養基時不可同時加入，加入甲鹽后先調節pH再加入乙鹽�；�礎培養基也可直接選購DIFCO公司生產的葉酸測定用培養基）
（22） 瓊脂培養基：

加水至100 ml，置水浴煮至瓊脂完全熔化，調節pH 6.8±0.1。盡快倒入試管中，每管3～5 ml，塞上棉塞，121℃高壓滅菌15 min,取出后直立試管，冷卻至室溫.于冰箱內保存。
5.菌種制備與保存
（1） 儲備菌種的制備：將L.C純菌種轉接至2個或多個瓊脂培養基管中。37 ℃±0.5 ℃恒溫培養箱中培養16～24 h。貯于冰箱內，每周轉種一次留作儲備菌種。
（2） 種子培養液的制備：取2 ml葉酸標準使用液和10 ml基礎培養基，混勻，分裝至4支5 ml離心管中，塞上棉塞，121℃高壓滅菌15 min，實驗時現制。